Parasitas de SPS — “red bugs” e “black bugs”

Guia de identificação, medidas preventivas e revisão dos protocolos de tratamento

Adaptação: Rodrigo Silva

Neste artigo, iremos examinar algo que a maioria dos aquaristas têm pavor de encontrar: parasitas de corais. As espécies Alteuthellopsis, Parategastes e Tegastes são as mais comuns, e as duas últimas são comumente chamadas de “red bugs” ou “black bugs”.

Prevenção

Vamos começar pelo que interessa: como previnir? Um aquário difere bastante de um recife de corais. A temperatura, os nutrientes e diversos outros fatores podem contribuir para populações ou explosões populacionais de copépodes indesejados. Embora esses fatores possam favorecer infestações, o aquarista dispõem de vários métodos, incluindo quarentena, controle químico ou erradicação, controles biológicos — inclusive a manipulação de parâmetros físicos e químicos — e controle seletivo por predadores naturais.

O velho ditado “é melhor prevenir do que remediar” aplica-se tanto aos procedimentos de quarentena como aos cuidados de manutenção. Entretanto, a eficácia dos procedimentos de pré-tratamento e quarentena atualmente aceitos ainda não foi validada para muitos gêneros de copépodes parasitas.

Um detalhe importante: A introdução de copépodes "reef safe" é fundamental para previnir problemas com parasitas. A Academia do Aquário fornece copépodes da espécie Tisbe e Tigriopus, que não incomodam os corais e servem de alimento para peixes como o Mandarim

Parâmetros que podem afetar as populações de parasitas

Parte de uma estratégia bem-sucedida de controle de parasitas pode envolver a manipulação de parâmetros físicos. Vamos discutir brevemente dois deles — temperatura e movimento da água. São parâmetros fáceis de controlar, embora isso não seja necessariamente barato.

Temperatura

A temperatura é um parâmetro facilmente mensurável em qualquer corpo d’água, e sua importância na regulação das reações biológicas e bioquímicas é bem conhecida. Ainda assim, encontrei pouquíssimas menções à temperatura ao revisar diversos textos sobre parasitas voltados ao aquarismo. Sparks (1985), porém, menciona que temperaturas próximas ao limite inferior de tolerância são importantes para manter parasitas, doenças etc. sob controle.

Nota: Humes e Lee (1985) constataram que as populações do copépode parasita Anthessius aumentaram em amêijoas Pecna em águas próximas a Hong Kong durante a parte final do ano. Quando comparada aos dados ambientais médios da região (temperaturas do ar e da água, precipitação), parece haver uma tendência geral de maior número de “bugs” nos períodos de águas mais quentes. No entanto, esse também é um período de menor precipitação, o que poderia reduzir a entrada de nutrientes. Essa observação está longe de ser conclusiva.

Todo aquarista experiente já observou a "explosão" de vários organismos — geralmente indesejáveis — nos aquários, resultantes de um efeito dominó de mudanças, algumas sem dúvida desencadeadas pela água quente. 

Embora existam muitas evidências subjetivas, ainda é necessário estudar os efeitos da temperatura sobre as populações de parasitas de corais. No entanto, manter a temperatura de um aquário em valores tão baixos quanto 22 °C não causa grandes problemas.

Figura 147. Amêijoas (Pecna viridis) infestadas por copépodes Anthessius. Compare com os dados meteorológicos da região apresentados a seguir. De Humes e Lee, 1985.

Figura 148. Dados climáticos mensais de Hong Kong. As temperaturas do ar e da água são valores médios. A precipitação é expressa pelo número de dias do mês em que a chuva excedeu 0,1 mm, 25 mm e 50 mm. Fonte: Hong Kong Observatory (www.weather.gov.hk/cis/normal/1961-1990/enormal07.htm).

Movimento da água

Quem faz mergulho sabe que no mar o movimento da água é muito maior do que o observado na maioria dos aquários. A alta velocidade da água poderia remover os parasitas dos tecidos dos corais, deixando-os disponíveis para serem comidos pelos peixes. 

É especulativo afirmar que pouca movimentação da água favoreça infestações parasitárias; contudo, em geral aceita-se que a fotossíntese das zooxantelas seja proporcional — até certo limite — à velocidade da água quando há energia luminosa suficiente. Se o movimento da água for baixo, a quantidade de nutrientes obtida pelo coral a partir de seus simbiontes do gênero Symbiodinium também poderá ser menor. Nesse caso, as reservas energéticas do coral podem ficar limitadas, fazendo com que uma infestação por copépodes parasitas tenha impacto maior.

Isolamento do hospedeiro

Durante a preparação deste artigo, o autor do texto original isolou centenas de parasitas Tegastes (ou Parategastes) do coral hospedeiro e examinou no microscópio ao longo de vários dias. Curiosamente, não foi observada nenhuma fêmea com sacos ovígeros. Esses “bugs” permaneceram isolados do hospedeiro por cerca de quatro dias antes de morrer. No entanto, foram observados muitos protozoários na amostra, o que sugere que as condições ambientais (oxigênio dissolvido, pH etc.) não foram a causa da morte dos copépodes.

Por que não havia fêmeas se reproduzindo? Será que esses copépodes parasitas específicos têm vida excepcionalmente longa, tornando desnecessária uma reprodução rápida?

Tratamentos contra copépodes parasitas

A primeira pergunta a fazer é: “Devo tratar?”. O melhor cenário seria não haver parasitas, mas pode ser que alguns poucos talvez não causem danos significativos. Além disso, alguns copépodes parasitas parecem ter forte especificidade por determinadas espécies de coral, de modo que o risco de infestarem outras espécies pode ser inexistente ou mínimo. Entretanto, infestações que provoquem perda de coloração, redução da expansão dos pólipos ou mal-estar geral do coral devem ser levadas a sério e tratadas com um protocolo metódico.

Os copépodes são suscetíveis a diversas substâncias químicas, e uma revisão de literatura mais antiga (Kabata, 1970; Dulin, 1976) sugere o uso de inseticidas como DDT (!), lindano (!) e Dylox. Felizmente, não precisamos recorrer a métodos tão drásticos e perigosos para controlar parasitas de corais.

O sucesso do tratamento de infestações por copépodes depende de muitos fatores. Sabemos muito pouco sobre a resistência dos animais ao procedimento de tratamento, embora haja poucos indícios de que um gênero de copépode seja mais resistente que outro a determinado “medicamento”. Se considerarmos que todos os “bugs” são igualmente suscetíveis, outros dois fatores entram em jogo: dose e duração do tratamento. Esses parâmetros estão sendo refinados, como mostram as informações a seguir.

Tratamentos em quarentena para “red bugs” e “black bugs”

Há vários produtos disponíveis aos aquaristas para controlar esses “bugs”. Com exceção do ReVive (obtido como amostra do fabricante), as soluções foram adquiridas em canais normais de varejo. Todos foram testados segundo os protocolos descritos a seguir.

Protocolo de teste

Como não tenho acesso a todos os parasitas de corais, decidi realizar alguns bioensaios usando organismos semelhantes. Não devemos nos preocupar apenas com o organismo-alvo: também é preciso examinar os efeitos do medicamento sobre uma variedade de organismos. Foram incluídas observações feitas por um grupo selecionado de aquaristas. Esses comentários não devem ser considerados abrangentes; são resultados obtidos com uma espécie específica de “bug”, sob as condições de teste descritas.

Protocolo: caracóis, planárias e copépodes foram coletados em um lago de água doce e divididos em um grupo de estudo e um grupo-controle. Os grupos foram colocados em bandejas de aço inoxidável contendo um litro de água do lago. O medicamento foi adicionado conforme as recomendações do fabricante. As observações foram contínuas durante o tempo de tratamento recomendado, após o qual foi realizada pelo menos uma troca de água. Uma observação final foi feita após 24 horas. Os ensaios foram realizados duas vezes, com cerca de uma semana de intervalo.

ReVive Coral Cleaner

• Fabricante: Two Little Fishies.
• Contém: Oleum abietis, 5.000 mg/L; Citrus limon, 5.000 mg/L (ou 0,5% de cada).
• pH: 5,27 a 24,2 °C. Não afeta adversamente o pH da água quando se seguem as recomendações de dosagem do fabricante.
• 1 tampa: 8 mL.
• Data de validade indicada no rótulo: não.

Figura 149. ReVive, produto “limpador de corais” da Two Little Fishies.

Este produto é eficaz contra crustáceos, incluindo copépodes. Não se destina ao tratamento de aquários inteiros.

O rótulo lista dois principais ingredientes ativos: Oleum abietis (óleo de pinheiro ou abeto) e Citrus limon (extrato da casca de limão). O óleo de pinho é frequentemente usado por pessoas como descongestionante e tem propriedades antissépticas. Extratos de casca de limão obtidos por prensagem a frio têm diversos usos comerciais e industriais.

A embalagem que obtive não tinha data de validade. Se armazenado corretamente, no escuro e sob refrigeração, provavelmente tem vida útil de um a dois anos. Quando Citrus limon se degrada, desenvolve um odor semelhante ao da terebintina, que pode servir como indicador das condições do produto.

Considerei o produto um limpador de corais eficaz. Um exemplar de Montipora foi imerso em uma solução de ReVive durante 16 minutos, embora copépodes e outros crustáceos tenham abandonado o coral poucos minutos após o início do tratamento. O coral apresentou alguma liberação de muco — aproximadamente a mesma observada quando a maioria dos corais é manuseada — e foi imerso em água do aquário sem ReVive antes de ser devolvido ao aquário. A solução de ReVive e os detritos foram passados por uma malha de 190 micrômetros, e o material coletado foi examinado ao microscópio. Foram observados vários anfípodes e copépodes, além de alguns animais não identificados. Veja a Figura 150. A taxa de mortalidade dos copépodes foi de 100%.

O exemplar de Montipora foi escolhido para o tratamento porque havia perdido inexplicavelmente a maior parte de sua coloração laranja vibrante, e baterias de testes não haviam revelado fatores ambientais — sobretudo químicos — que explicassem o fenômeno. Após cerca de três semanas, notei que partes do exemplar estavam recuperando sua fluorescência laranja. Não posso garantir que o banho de limpeza tenha sido responsável pelo retorno da cor, mas não consigo oferecer outra explicação.

Figura 150. Copépode “expulso” de um exemplar de Montipora pelo produto ReVive. Observe os pontos marrons dentro do crustáceo: seriam zooxantelas ou apenas coloração natural? Fotomicrografia do autor.

Resultados do tratamento com ReVive (usando animais de água doce, conforme o protocolo acima)

• Crustáceos não identificados: taxa de mortalidade de 94% após banho de 15 minutos.
• Caracóis: inicialmente ficaram atordoados pelo tratamento, mas aparentemente haviam se recuperado por completo quando observados após 24 horas.

MelaFix Marine

• Fabricante: Aquarium Pharmaceuticals.
• Contém: óleo da árvore Meleluca, 12.500 mg/L (ou 1,25%).
• pH: 4,16 a 22,1 °C. Não afeta adversamente o pH da água quando se seguem as recomendações de dosagem do fabricante.
• 1 tampa: 11,3 mL.
• Data de validade indicada no rótulo: sim. Comprado em outubro de 2009; validade até julho de 2012.

Figura 151. Melafix, um “remédio para corais” da API.

O aquarista Steve Ruddy compartilhou gentilmente suas experiências com “black bugs” (veja as Figuras 5, 6 e 7) e MelaFix. Ele observou que os “black bugs” abandonaram o coral hospedeiro (uma espécie de Montipora — veja a Figura 4) cerca de 20 minutos após o início do tratamento. Nota: o tempo de tratamento de 20 minutos usado por Ruddy ultrapassa o limite máximo de 5 minutos recomendado pelo fabricante. Os copépodes se depositaram no fundo do recipiente e nadaram em círculos; todo movimento cessou 30 minutos após o início do tratamento. No entanto, os parasitas não morreram durante o processo e ainda estavam vivos cerca de 24 horas depois do início do tratamento.

Convém observar que o óleo de Meleluca é considerado carcinogênico pelo estado da Califórnia, e os frascos de MelaFix Marine trazem essa indicação.

Resultados do tratamento com MelaFix (usando animais de água doce, conforme o protocolo acima)

• Crustáceos não identificados: taxa de mortalidade de 97,5% após banho de 15 minutos.*
• Caracóis: inicialmente ficaram atordoados pelo tratamento, mas aparentemente haviam se recuperado por completo quando observados após 24 horas.

*Observação interessante: ao comparar as taxas de mortalidade de diferentes copépodes, fica evidente que esse produto é muito eficaz contra alguns “bugs”, mas não tanto contra outros. Talvez essa distinção não seja decisiva, pois Ruddy constatou que o produto funcionou muito bem para fazer os “bugs” saírem de um coral Montipora durante um “banho” de quarentena, mesmo sem matá-los.

Figura 152. Após o tratamento com Melafix, estes copépodes não identificados (“black bugs”) abandonaram um exemplar de Montipora debilitado. Foto cedida por Steve Ruddy.

Pro-Coral Cure

• Fabricante: Tropic Marin.
• Contém: iodo, cerca de 5.600 mg/L (ou 0,56%).
• pH: 6,49 a 22,0 °C. Não afeta adversamente o pH da água quando se seguem as recomendações de dosagem do fabricante.
• Data de validade indicada no rótulo: não.

A embalagem deste produto usa uma pequena bomba de pressão para dispensar a solução de iodo. Verifiquei que ela liberava 0,7 mL (embora seja anunciada como dispensando 1 mL). Menciono isso porque achei a bomba pouco prática e sujeita a derramamentos; por isso, preferi

medir a solução com uma pera de sucção e uma pipeta. Para quem administra o produto manualmente, uma dose menor que a recomendada parece funcionar bem (veja os resultados abaixo).

Figura 153. Pro-Coral Cure, produto à base de iodo da Tropic Marin.

Resultados do tratamento com Pro-Coral Cure (usando animais de água doce, conforme o protocolo acima)

• Crustáceos não identificados: taxa de mortalidade de 94% após banho de 15 minutos.
• Caracóis: inicialmente ficaram atordoados pelo tratamento, mas aparentemente haviam se recuperado por completo quando observados após 24 horas.
• Este produto também foi testado como agente de controle de platelmintos. Trataremos disso em um artigo futuro.

Prazo de validade dos “banhos para corais”

• A dosagem baseia-se no teor do agente reativo. A maioria dos produtos tem prazo de validade limitado, e uma data de validade consta — ou deveria constar — na embalagem. Por exemplo, a Melaleuca se degrada quando exposta à luz, ao calor, à umidade e ao ar, e o produto que a contém (MelaFix, Aquarium Pharmaceuticals) apresenta uma data de validade no frasco. Essa data existe por um motivo: não a ignore. Armazene esses produtos e outros semelhantes em local escuro, fresco e seco, em recipientes com pouco ar no interior (Carson et al., 2006), para evitar mudanças consideráveis na composição química. O único sinal de deterioração de que tenho conhecimento é o possível desenvolvimento de odor de terebintina.

O produto ReVive, da Two Little Fishies, não tem data de validade.

O Pro-Coral Cure da Tropic Marin também não traz data de validade. A degradação do iodo está frequentemente associada à intensidade da luz. Guarde esse produto no escuro.

Álcoois etílico e metílico

Os álcoois etílico e metílico são tóxicos para invertebrados, dependendo, naturalmente, da dose. Em diversos artigos, o especialista em copépodes Arthur Humes menciona o uso de álcool etílico a 95% para preparar uma solução de álcool a 5% em água do mar. Ele deixou vários corais imersos nessa solução por períodos que variaram de várias horas até uma noite inteira e constatou que copépodes endoparasitas abandonavam seus hospedeiros. Testei o procedimento e confirmei a observação, mas ele também matou o coral hospedeiro.

Tratamentos no aquário contra “red bugs” e “black bugs”

Os tratamentos realizados dentro do aquário se enquadram em duas categorias gerais: biológicos e químicos. Pessoalmente, eu preferiria um meio natural de controlar os parasitas de corais; entretanto, há vários problemas associados a essa abordagem. Acredito que isso se deva à falta de sucesso que tive ao longo dos anos ao selecionar peixes, caranguejos, nudibrânquios e outros animais para eliminar algum tipo de praga.

Os controles biológicos estão sujeitos às escolhas e ao comportamento individual dos predadores de parasitas. Aquaristas experientes sabem que indivíduos de uma mesma espécie de peixe podem ter personalidades e comportamentos próprios. Por exemplo, alguns peixes- borboleta Copperband destroem colônias de Aiptasia, enquanto outros podem demonstrar pouco ou nenhum interesse em comer essas anêmonas. Outros peixes podem ter exigências alimentares específicas, e eliminar parasitas por predação pode levar à morte do peixe predador por inanição. Como vimos, muitos parasitas de corais residem no interior dos tecidos; removê- los biologicamente com sucesso poderia exigir uma perda substancial de tecido do coral — um caso em que a cura do parasitismo seria obtida à custa da perda do hospedeiro. Ainda assim, minhas experiências não serão necessariamente iguais às suas. Desejo boa sorte nessa tentativa.

Tratamentos químicos

Oxima de milbemicina (Interceptor™)

• Fabricante: Novartis AG.
• Protocolo de tratamento desenvolvido por: Dustin Dorton.
• Observações: armazenar a oxima de milbemicina à temperatura ambiente.

Interceptor é um medicamento comercializado para tratar sarna canina, vermes oculares, lombrigas, ancilostomídeos, tricuros e dirofilárias em cães; verificou-se que é eficaz contra pelo menos alguns táxons de copépodes parasitas.

Segundo Dorton, um comprimido de Interceptor™ (destinado a cães de grande porte, com peso de 51 a 100 libras) pesa um grama e contém 23 mg de oxima de milbemicina. Um comprimido é triturado até virar pó; 25 mg desse material são adicionados a um pequeno recipiente com água do aquário e misturados (pode ser necessário mexer bastante). Essa água, contendo 25 mg do comprimido, é suficiente para tratar 10 galões de volume real de água do aquário. Em outras palavras, segundo Dorton, um comprimido contendo 23 mg de oxima de milbemicina trata 380

galões (400 galões, segundo meu cálculo). Uma escola ou universidade, laboratório ou estação de tratamento de água ou esgoto de maior porte da região pode dispor de uma balança analítica e talvez realizar a pesagem para você.*

• Retire do aquário todos os camarões e caranguejos. Remova a filtragem mecânica e o carvão ativado. Desligue os esterilizadores UV e os skimmers de proteínas (mas a água deve continuar circulando por esses equipamentos para que o volume de água contido neles também receba o medicamento).
• Adicione ao aquário uma quantidade suficiente do medicamento. Deixe o tratamento agir por seis horas e faça uma troca de água de 25%. Retome o uso do carvão, do skimmer etc.
• Repita o procedimento sete dias depois e novamente após 14 dias.

* A dosagem aparentemente não é tão crítica quanto Dorton sugeriu, pois o tempo demonstrou que concentrações mais altas — cinco vezes ou mais a dose recomendada por Dorton — causam pouco ou nenhum dano aos corais.

Oxima de milbemicina e lufenuron (Sentinel™)

• Fabricante: Novartis AG.
• Além da milbemicina, este produto também contém lufenuron para controle de pulgas.

Lufenuron (Program™)

• Fabricante: Novartis AG.
• Não é recomendado para uso no tratamento de corais.

Ivermectina (Stromectol™, Ivomec™, HeartGard™, Iverhart Plus™, Tri- Heart Plus™ e Acarexx™)

A ivermectina é usada contra piolhos, ácaros e ácaros de ouvido; também é um anti-helmíntico (eficaz contra lombrigas, vermes do coração e vermes pulmonares) em bovinos e suínos. Também é prescrita para seres humanos no tratamento da filariose de Bancroft e da sarna.

Wright (2009) sugere o seguinte protocolo: dissolver Ivomec (solução a 1%) em propilenoglicol (um álcool). Dosar a 0,75 mg/L por galão (volume real). O artigo de Wright usou 34 mg em 45 galões.

• Desligue o skimmer de proteínas, o esterilizador UV e os filtros canister; disperse a solução de Ivomec em um fluxo forte de água dentro do aquário. Após 12 horas, filtre a água com carvão ativado novo e retome o uso do skimmer e da esterilização UV. Repita esse tratamento a cada duas semanas, totalizando três aplicações.

O autor (Wright) alerta que esse tratamento pode prejudicar artrópodes, moluscos, crustáceos, outros invertebrados (suponho que ele não esteja se referindo a corais além do exemplar de Acropora mencionado no artigo) e peixes-anjo.

MelaFix Marine

• Fabricante: Aquarium Pharmaceuticals.
• Consulte os detalhes acima. A API recomenda esse produto para tratamento do aquário inteiro, mas essas alegações não foram avaliadas por este autor.

Identificação

A seguir, uma lista de espécies parasitas e sua identificação:

Ordem: Harpacticoida Família: Peltidiidae Gênero: Alteuthellopsis

Família: Tegastidae Gêneros: Parategastes, Tegastes

Ilustração do artigo original

Como regra geral, os “bugs” da ordem Harpacticoida são menores que os copépodes da família Xarifiidae, atingindo no máximo cerca de 0,5 mm de comprimento. Em geral, são considerados endoparasitas e acredita-se que vivam principalmente na cavidade gastrovascular dos pólipos de coral.

Ordem Harpacticoida · Família Peltidiidae · Gênero Alteuthellopsis

Alteuthellopsis corallina

• Hospedeiros: Acropora exigua, Astreopora sp., Goniastrea retiformis, Merulina ampliata, Montipora verilli, Platygyra daedala, Platygyra sp. e Pocillopora damicornis.
• Tamanho máximo registrado (fêmea): 0,63 mm.
• Tamanho máximo registrado (macho): 0,57 mm.
• Coloração: cinza ligeiramente opaco, olho vermelho, sacos ovígeros cinza-acastanhados escuros.
• Localidade: atol de Eniwetok, Ilhas Marshall; Ilha Lizard, Grande Barreira de Corais (GBR).
• Referência: Humes, 1981.

Figura 132. Alteuthellopsis corallina, vista lateral.

Figura 133. Alteuthellopsis corallina, vista dorsal.

Ordem Harpacticoida · Família Tegastidae · Gêneros Parategastes e Tegastes

Nomes comuns: red bugs, black bugs.

Os “red bugs” são o pesadelo de quem mantém Acropora, e é crença popular entre aquaristas que eles sejam os únicos parasitas de corais SPS. O “terrível” Tegastes acroporanus foi formalmente descrito a partir de apenas uma espécie de Acropora.

Os copépodes da família Tegastidae (Crustacea, Copepoda, Harpacticoida) caracterizam-se por um corpo comprimido lateralmente, semelhante ao dos anfípodes, uma região genital masculina modificada e náuplios que possuem uma mandíbula em forma de garra (Lang, 1948; Ivanenko et al., 2008). Cerca de 60 espécies pertencentes a seis gêneros foram descritas, embora as espécies listadas como parasitas de corais sejam poucas em relação ao número de espécies de Xarifiidae conhecidas por infestar corais. Como regra prática, os copépodes Tegastidae são muito menores que os copépodes Xarifiidae.

Figura 134. Tegastes cnidicus. Embora não seja conhecido como parasita de corais (essa espécie prefere hidrozoários), seu formato é representativo do grupo. Vista lateral.

Figura 135. Tegastes cnidicus. Vista dorsal.

Com exceção da espécie de águas profundas Smacigastes micheli (Ivanenko & Defaye, 2004), todas as espécies de Tegastidae foram encontradas em habitats rasos, associadas a algas, briozoários e/ou cnidários. Nem todas são parasitas de animais. Por exemplo, Tegastes nanus é encontrado associado à alga vermelha Ceramium e às algas pardas dos gêneros Fucus e Laminaria. Tegastes falcatus alimenta-se de ciliados suctórios encontrados no briozoário Flustra foliacea, enquanto T. longimanus ocorre em costões rochosos abrigados e lagos salgados. T. acroporanus é um parasita conhecido de pelo menos um coral: a espécie pacífica Acropora florida.

Figura 136. “Red bugs” em um exemplar de Acropora parecem vermelhos quando refletem a luz. Foto do autor.

Figura 137. Observe a coloração vermelha concentrada no ramo caudal e a mancha ocular refletiva. Seriam estes Tegastes paulipes? Foto cedida por Greg Ho e www.ximinasphotography.com.

Figura 138. O mesmo coral da Figura 137. Observe os “bugs” dentro dos coralitos de Acropora. Esses parasitas estariam tentando entrar nas cavidades gastrovasculares do coral ou estariam sendo comidos? Foto cedida por Greg Ho e www.ximinasphotography.com.

Figura 139. Um “red bug” com coloração castanho-avermelhada sob luz transmitida. Compare com as fotos abaixo. Foto do autor.

Figura 140. O mesmo exemplar de Tegastes mostrado na Figura 139 contém uma proteína fluorescente e parece verde quando recebe a luz de excitação apropriada. Esse “bug” incorporou proteínas fluorescentes obtidas do coral hospedeiro? Fotomicrografia do autor.

Figura 141. Nem todos os “bugs” são vermelhos, como mostra este copépode tegastídeo “preto”. O exemplar não identificado foi encontrado em um coral Montipora. Microfotografia do autor.

Figura 142. Embora seja uma espécie de águas profundas, Smacigastes micheli demonstra a beleza (ou o aspecto assustador, dependendo do ponto de vista) dos copépodes parasitas. De Ivanenko & Defaye, 2004.

Tegastes acroporanus

• Hospedeiro: Acropora florida.
• Tamanho máximo registrado (fêmea): ?
• Tamanho máximo registrado (macho): ?
• Coloração: vermelha, segundo relatos de aquaristas.
• Localidade: atol de Eniwetok, Ilhas Marshall.
• Referência: Humes, 1981.

Tegastes gemmeus

• Hospedeiros: Cyphastrea celina e Pocillopora capitata (listada como P. verrucosa).
• Tamanho máximo registrado (fêmea): 0,43 mm.
• Tamanho máximo registrado (macho): 0,41 mm.
• Coloração: cinza, com olho vermelho.
• Localidade: Oahu, Havaí.
• Referência: Humes, 1984.

Figura 143. Tegastes gemmeus, copépode conhecido por infestar corais havaianos. Esta é uma vista dorsal típica de Tegastes e Parategastes.

Tegastes georgei

• Hospedeiros: Stylophora sp. e Pocillopora sp.
• Tamanho máximo registrado (fêmea): ?

• Tamanho máximo registrado (macho): ?
• Coloração: ?
• Localidade: Golfo de Eliat, Mar Vermelho.
• Referência: Humes, 1984.

Tegastes paulipes

• Hospedeiro: Pocillopora verrucosa.
• Tamanho máximo registrado (fêmea): 0,42 mm.
• Tamanho máximo registrado (macho): 0,42 mm.
• Coloração: bege-claro a cinza, com áreas âmbar mais escuras, olho vermelho e sacos ovígeros cinza.
• Localidade: Ilhas Molucas.
• Referência: Humes, 1984.

Figura 144. Tegastes paulipes, fêmea, vista lateral.

Figura 145. Um “red bug” coletado de um exemplar de Acropora mantido em cativeiro. Seria Tegastes paulipes? É interessante, pois T. paulipes não é oficialmente reconhecido como parasita de espécies de Acropora. Foto cedida por Greg Hiller. Mais detalhes: http://www.advancedaquarist.com/issues/june2003/ feature.htm.

Parategastes conexus

• Hospedeiro: Stereonephthya ulicoides.
• Tamanho máximo registrado (fêmea): 0,41 mm.
• Tamanho máximo registrado (macho): 0,43 mm.
• Coloração: bege acinzentado pálido e opaco, olho vermelho, região genital vermelho-viva e sacos ovígeros cinza.

• Localidade: Ilhas Molucas.
• Referência: Humes, 1984.

Figura 146. Parategastes conexus, parasita conhecido apenas no coral mole Stereonephthya.

Ordem Siphonostomatoida · Família Asterocheridae · Gêneros Acontiophorus e Stockmyzon

Há poucas informações sobre esses copépodes em comparação com alguns outros gêneros. Esses “bugs” parecem estar restritos ao Atlântico e ao Mediterrâneo, não havendo relatos no Pacífico.

Acontiophorus scutatus

• Hospedeiro: Asterocheres astroidicola.
• Referência: Humes e Ho, 1968a.

Stockmyzon mucronipes

• Hospedeiro: Astroides calycularis.
• Tamanho máximo registrado (fêmea): 1,42 mm.
• Tamanho máximo registrado (macho): 1,08 mm.
• Coloração: translúcido, olho vermelho e sacos ovígeros cinza.
• Localidade: Madagascar.
• Referência: Humes e Ho, 1968a.

Conclusões

Nem todos os copépodes associados aos corais escleractínios são prejudiciais. Contudo, nossa falta de conhecimento nos leva a supor que corais cobertos por copépodes estejam em perigo.

Existem centenas, talvez milhares, de parasitas de corais. Parece haver parasitas especialistas que vivem dentro ou sobre espécies específicas de corais, enquanto outros são generalistas e podem infestar e alimentar-se de diversas espécies. Embora existam indícios, entre aquaristas, de que os “bugs” possam adotar uma nova espécie de coral como hospedeira se o hospedeiro original morrer, serão necessários anos de pesquisa para estabelecer como esses parasitas se comportam em ambientes artificiais.

Não é incomum que aquaristas mantenham juntos corais do Atlântico (chicotes-do-mar, leques- do-mar, Manicina etc.) e espécies de corais do Pacífico. Não sabemos como os parasitas de diferentes localidades interagem com hospedeiros potenciais de outras regiões.

Copépodes parasitas podem introduzir patógenos bacterianos.

Muitos parasitas são internos e não são facilmente percebidos; endoparasitas que vivem nas cavidades gastrovasculares permanecem ocultos. Stock (1988) discute a facilidade com que endoparasitas do Pacífico podem ser removidos dos tecidos de seus corais hospedeiros. Parasitas internos de corais do Atlântico/Caribe são mais difíceis de remover que os encontrados em seus equivalentes do Pacífico. De fato, esse pesquisador afirma que parasitas da família Corallovexia (e talvez Corallonoxia) só se tornaram visíveis depois que os tecidos do hospedeiro foram dissolvidos quimicamente. Isso significa que os protocolos atuais de tratamento são incapazes de eliminar os copépodes parasitas dos tecidos do hospedeiro? Sem documentação adicional, a pergunta permanece sem resposta.

Alguns copépodes parasitas consomem tecidos do coral, incluindo zooxantelas simbióticas, que são então incorporadas ao corpo do parasita. Presumivelmente, o parasita estabelece uma relação simbiótica com Symbiodinium sp. Assim, alguns parasitas não apenas consomem os tecidos dos corais, como também privam os corais dos benefícios de seus simbiontes algais. Grandes quantidades de parasitas externos também podem sombrear as zooxantelas e causar perda da reciclagem benéfica de nutrientes.

O número de “bugs” em um coral é apenas parte da equação. É importante considerar o grau de trauma causado pelo parasita, comparando a quantidade de dano com a quantidade de tecido. Dividir os corais simplesmente em categorias de “pólipos grandes” e “pólipos pequenos” pode ser insuficiente para estimar o impacto potencial dos parasitas. No caso dos corais SPS, o aquarista deve considerar a porosidade do esqueleto. Esqueletos perfurados são porosos; os não perfurados não possuem esses canais, que frequentemente contêm tecidos vivos e moles do coral. Por exemplo, corais dos gêneros Montipora e Porites geralmente são muito porosos, e danos superficiais aos tecidos têm menor probabilidade de se transformar em um problema de saúde. Por outro lado, alguns corais — como Pocillopora meandrina — têm esqueletos duros como rocha e não porosos; danos à camada muito fina de tecido mole que recobre o esqueleto podem ter impacto bem maior do que a mesma quantidade de dano em um coral poroso. Em geral, as espécies de Acropora são descritas como tendo esqueletos não perfurados. No entanto, aquaristas com muita experiência na fragmentação de Acropora observaram canais de tecido vivo dentro do esqueleto. Portanto, as Acropora não se encaixam em uma classificação simples e devem ser avaliadas caso a caso. Isso pode explicar por que os “bugs” não costumam ser um problema tão grande nos corais moles.

Tratamentos químicos específicos podem não ser uma solução universal para parasitas de corais. Há evidências de que um tratamento prescrito elimina alguns “bugs”, mas apenas irrita outros.

Existem muitas fotografias de ectoparasitas dos gêneros Tegastes, Parategastes e outros. Apesar do grande número de copépodes Xarifiidae parasitas, aquaristas não forneceram fotografias desses “bugs”. Isso sugere que os endoparasitas — embora maiores e representados por mais espécies — não sejam abundantes nas espécies de corais importantes para o aquarismo, ou simplesmente tenham passado despercebidos por serem ocultos e/ou difíceis de remover. Recomenda-se manter os métodos atuais de pré-tratamento, embora não saibamos se são eficazes contra copépodes endoparasitas.

Há controles biológicos disponíveis para alguns copépodes, mas às vezes os resultados são incertos.

Na ausência do hospedeiro, alguns copépodes (especificamente o “bug” Tegastes(?) mostrado na Figura 7) sobrevivem por apenas alguns dias — cerca de 48 horas, com base em observações limitadas.

Aquaristas que utilizam medicamentos diretamente no aquário devem esperar perdas de organismos. Isso pode decorrer da sensibilidade dos organismos à toxicidade da substância química ou talvez de efeitos secundários. Até onde sei, ninguém investigou a resposta das bactérias nitrificantes aos medicamentos mencionados neste artigo. As populações de bactérias nitrificantes geralmente são mais facilmente perturbadas do que as bactérias que utilizam compostos de carbono.

Este artigo é apenas uma pequena ferramenta para ajudar aquaristas experientes a responder a muitas perguntas. Recomenda-se fotografar e documentar os organismos observados durante surtos parasitários e comparar observações sobre os fatores ambientais que possam favorecer explosões populacionais dos parasitas.

Por enquanto, a prevenção de infestações no aquário depende de dois procedimentos simples: tratar para remover os parasitas existentes e, em seguida, manter o coral em quarentena para evitar a introdução de massas de ovos ou adultos que tenham sobrevivido. Depois que os corais entram no aquário de exposição, o tratamento e o controle das infestações tornam-se muito mais complexos. Os medicamentos são apenas um paliativo para os fatores ambientais que favorecem explosões populacionais, e não está claro se os protocolos de tratamento atuais são eficazes contra todos os gêneros parasitas. Pesquisas sobre controles biológicos são incentivadas, mas os aquaristas devem aceitar que não há garantia de erradicação dos parasitas nem de sobrevivência do predador a longo prazo.

Na próxima edição, examinaremos copépodes parasitas encontrados em corais moles, gorgônias e amêijoas do gênero Tridacna.

Tabela: Copépodes parasitas listados por coral hospedeiro

O tamanho indicado para os copépodes é uma média. Consulte a Tabela 3 para a listagem por parasita.

Coral hospedeiro	Copépode parasita	Tamanho / coloração	Referência
Acrhelia horrescens	Xarifia plectrata	1mm; cinza, com olho vermelho	Humes, 1985
Acrhelia horrescens	Anchimolgus abbreviatus		Humes, 1991
Acrhelia horrescens	Anchimolgus tenuipes		Humes, 1991
Acropora abrotanoides	Xarifia anomala	1.25mm	Humes, 1985
Acropora abrotanoides	Xarifia breviramea	1.74mm	Humes, 1985
Acropora abrotanoides	Xarifia sabiuraensis	1.6mm	Humes, 1985
Acropora abrotanoides	Xarifia trituberata	1.6mm	Humes, 1985
Acropora convexa	Xarifia anomala	1.25mm	Humes, 1985
Acropora convexa	Xarifia sabiuraensis	1.6mm	Humes, 1985
Acropora convexa	Scyphuliger longicaudus		Kim, 2003
Acropora ‘corymbosa’ group	Xarifia anomala	1.25mm	Humes, 1985
Acropora ‘corymbosa’ group	Xarifia breviramea	1.74mm	Humes, 1985
Acropora ‘corymbosa’ group	Xarifia gerlachi	~2mm	Humes, 1985
Acropora ‘corymbosa’ group	Xarifia infrequens	1.5mm	Humes, 1985
Acropora ‘corymbosa’	Xarifia linearis	1.4mm	Nair, 1983
Acropora ‘corymbosa’ group	Xarifia trituberata	1.6mm	Humes, 1985
Acropora ‘corymbosa’ group	Xarifia tumorisa	1.3mm	Humes, 1985
Acropora ‘corymbosa’ group	Xarifia ablusa	1mm	Humes, 1985
Acropora corymbosa	Scyphuliger pilosus		Kim, 2003
Acropora corymbosa	Scyphuliger pennatus		Kim, 2003
Acropora cymbicyanthus	Scyphuliger tenuatis		Humes, 1990
Acropora cytheria	Xarifia gerlachi	~2mm	Humes, 1985
Acropora cytheria	Xarifia infrequens	1.5mm	Humes, 1985
Acropora cytheria	Xarifia tenuis	1.4mm	Humes, 1985
Acropora digitifera (?)	Xarifia ablusa	1mm	Humes, 1985
Acropora digitifera (?)	Xarifia anomala	1.25mm	Humes, 1985
Acropora digitifera (?)	Xarifia breviramea	1.74mm	Humes, 1985
Acropora digitifera (?)	Xarifia gerlachi	~2mm	Humes, 1985
Acropora digitifera (?)	Xarifia infrequens	1.5mm	Humes, 1985
Acropora digitifera (?)	Xarifia linearis	1.4mm	Nair, 1983
Acropora digitifera (?)	Xarifia trituberata	1.6mm	Humes, 1985
Acropora digitifera (?)	Xarifia tumorisa	1.3mm	Humes, 1985
Acropora elseyi	Xarifia ablusa	1mm	Humes, 1985
Acropora elseyi	Xarifia fastigata	1.5mm	Humes, 1985
Acropora elseyi	Xarifia tumorisa	1.3mm	Humes, 1985
Acropora exigua	Alteuthellopsis corallina		Humes, 1981b
Acropora exigua	Xarifia breviramea 1.74mm
Humes, 1985
Acropora exigua	Ecphysarion lobophorum	Humes and Ho,	1968
Acropora exilis	Scyphuliger latus	Kim, 2003
Acropora exilis	Scyphuliger aristoides	Humes, 1993
Acropora exilis	Scyphuliger paucisurculus	Kim, 2003
Acropora florida	Ecphysarion lobophorum	Humes & Stock,	1973
Acropora florida	Tegastes acroporanus	Humes, 1981
Acropora florida	Xarifia anomala 1.25mm	Humes, 1985
Acropora florida	Xarifia breviramea 1.74mm	Humes, 1985
Acropora florida	Xarifia gerlachi ~2mm	Humes, 1985
Acropora florida	Xarifia pectinea 1mm; cinza,	com olho vermelho Humes,	1985
Acropora florida	Xarifia sabiuraensis 1.6mm	Humes, 1985
Acropora florida	Xarifia trituberata 1.6mm	Humes, 1985
Acropora florida	Xarifia tumorisa 1.3mm	Humes, 1985
Acropora formosa	Xarifia basilica >3mm;	cinza-acastanhado opaco, olho vermelho Humes,	1985
Acropora formosa	Xarifia bullifera 1.35mm;	cinza opaco, olho vermelho Humes,	1985
Acropora formosa	Xarifia infrequens 1.5mm	Humes, 1985
Acropora formosa	Xarifia tumorisa 1.3mm	Humes, 1985
Acropora gemmifera	Xarifia species	Humes, 1985
Acropora gravida	Xarifia anomala	Humes, 1994
Acropora gravida	Xarifia breviramea		Humes, 1994
Acropora gravida	Xarifia gerlachi		Humes, 1994
Acropora gravida	Xarifia pectinea		Humes, 1994
Acropora gravida	Xarifia sabiuraensis		Humes, 1994
Acropora gravida	Xarifia trituberata		Humes, 1994
Acropora gravida	Xarifia tumorisa		Humes, 1994
Acropora hebes	Xarifia indica	1.5mm	Nair, 1983
Acropora hebes	Xarifia laccadivensis	1.6mm	Nair, 1983
Acropora hebes	Xarifia robusta	1.7mm	Nair, 1983
Acropora humilis	Xarifia ablusa	1mm	Humes, 1985
Acropora humilis	Xarifia anomala	1.25mm	Humes, 1985
Acropora humilis	Xarifia breviramea	1.74mm	Humes, 1985
Acropora humilis	Xarifia gerlachi	~2mm	Humes, 1985
Acropora humilis	Xarifia infrequens	1.5mm	Humes, 1985
Acropora humilis	Xarifia linearis	1.4mm	Nair, 1983
Acropora humilis	Xarifia longicauda	1.4mm	Nair, 1983
Acropora humilis	Xarifia pectinea	1mm; cinza, com olho vermelho	Humes, 1985
Acropora humilis	Xarifia trituberata	1.6mm	Humes, 1985
Acropora humilis	Xarifia tumorisa	1.3mm	Humes, 1985
Acropora hyacinthus	Xarifia anomala	1.25mm	Humes, 1985
Acropora hyacinthus	Xarifia basilica	>3mm; cinza-acastanhado opaco, olho	vermelho Humes, 1985
Acropora hyacinthus	Xarifia breviramea	1.74mm	Humes, 1985
Acropora hyacinthus	Xarifia gerlachi	~2mm	Humes, 1985
Acropora hyacinthus	Xarifia infrequens	1.5mm	Humes, 1985
Acropora hyacinthus	Xarifia pectinea	1mm; cinza, com olho vermelho	Humes, 1985
Acropora hyacinthus	Xarifia sabiuraensis	1.6mm	Humes, 1985
Acropora hyacinthus	Xarifia trituberata	1.6mm	Humes, 1985
Acropora hyacinthus	Xarifia tumorisa	1.3mm	Humes, 1985
Acropora hyacinthus	Scyphuliger concavipes		Humes, 1991
Acropora hyacinthus	Scyphuliger manifestus		Humes, 1991
Acropora hyacinthus	Scyphuliger eumorphus		Humes, 1993
Acropora intermeda	Xarifia anomala	1.25mm
Humes, 1985
Acropora intermeda	Xarifia breviramea	1.74mm	Humes, 1985
Acropora intermedia	Xarifia pectinea	1mm; cinza, com olho vermelho	Humes, 1985
Acropora intermedia	Xarifia sabiuraensis	1.6mm	Humes, 1985
Acropora intermedia	Xarifia trituberata	1.6mm	Humes, 1985
Acropora intermedia	Xarifia tumorisa	1.3mm	Humes, 1985
Acropora intermedia	Scyphuliger karangmiensis		Kim, 2007
Acropora millepora	Xarifia breviramea	1.74mm	Humes, 1985
Acropora palifera	Xarifia anomala	1.25mm	Humes, 1985
Acropora palifera	Xarifia exuta	2.5mm	Humes, 1985
Acropora palifera	Xarifia guttulifera	2.4mm	Humes, 1985
Acropora palifera	Xarifia mucronata	2.4mm	Humes, 1985
Acropora palifera	Schedomolgus exciliculus		Humes, 1993
Acropora palifera	Ecphysarion spinulatum		Humes, 1993
Acropora palifera	Unicispina latigentalis		Humes, 1993
Acropora palmata	Corallovexia similis		Stock, 1975
Herriot & Immerman,
Acropora palmata	Corallovexia sp.
1979
Acropora patula	Lipochrus acroporinus
Acropora patula	Xarifia pectinea		Humes, 1985
Acropora patula	Xarifia sabiuraensis	1mm; cinza, com olho vermelho	Humes, 1985
Acropora patula	Xarifia trituberata	1.6mm	Humes, 1985
Acropora patula	Xarifia tumorisa	1.6mm	Humes, 1985
Acropora patula	Schedomolgus idanus	1.3mm	Humes, 1985
Acropora pectinata	Xarifia sp.		Misaki, 1978
Acropora pectinata	Xarifia sp.		Misaki, 1978
Acropora rambleri	Lipochrus species		Humes, 1993
Acropora rambleri	Xarifia ablusa		Humes, 1985
Acropora rambleri	Xarifia breviramea	1mm	Humes, 1985
Acropora rambleri	Xarifia pectinea	1.74mm	Humes, 1985
Acropora rambleri	Xarifia sabiuraensis	1mm; cinza, com olho vermelho	Humes, 1985
Acropora rambleri	Xarifia trituberata	1.6mm	Humes, 1985
Acropora rosaria	Lipochrus acroporinus	1.6mm	Humes, 1985
Acropora rosaria	Xarifia ablusa		Humes, 1985
Acropora rosaria	Xarifia fastigata	1mm	Humes, 1985
Acropora rosaria	Xarifia rosariae	1.5mm	Humes, 1985
Acropora rosaria	Ecphysarion ampullulum	1.7mm	Humes, 1985
Acropora rosaria	Lipochrus acroporinus		Humes, 1993
Acropora sarmentosa	Xarifia pectinea		Humes & Dojiri, 1982
Acropora sarmentosa	Xarifia tumorisa	1mm; cinza, com olho vermelho	Humes, 1985
Acropora sp.	Xarifia anomala	1.3mm	Humes, 1985
Acropora sp.	Xarifia gerlachi	1.25mm	Humes, 1985
Acropora sp. cf. A. teres	Xarifia gerlachi	~2mm	Humes, 1985
Acropora squarrosa (millepora)	Xarifia tumorisa	~2mm	Humes, 1985
Acropora squarrosa (millepora)	Scyphuliger placidus	1.3mm	Humes, 1985
Acropora squarrosa (millepora)	Scyphuliger humesi		Kim, 2004
Acropora squarrosa (millepora)	Scyphuliger vicinus		Kim, 2004
Acropora syringodes	Xarifia species		Humes, 1991
Acropora valida	Xarifia breviramea		Humes, 1985
Alveopora catalai	Anchimolgus multidentatus 1.74mm		Humes, 1985
Alveopora mortensi	Xarifia mediolobata		Kim, 2003
Alveopora mortensi	Xarifia radians	2.6mm
Humes, 1985
Alveopora mortensi	Odontomolgus mundulus	2.3mm	Humes, 1985
Alveopora sp.	Xarifia brevicauda		Humes, 1974
1.35mm; opaco, vermelho-laranja
Astreopora sp.	Alteuthellopsis corallina		Humes & Ho, 1968
intestino, olho vermelho
Astreocheres astroidicola	Acontiophorus scutatis		Humes, 1981b
Astroides calycularis	Stockmyzon murinipes
Astroides calycularis	Stockmyzon mucronipes		Bandera and Huys
Bandera & Huys,
Colpophyllia natans	Corallavexia kristenseni
2008
Colpophyllia natans	Corallavexia mixtibrachium		Stock, 1975
Corallovexia
Colpophyllia natans			Stock, 1975
mediobrachium
Herriot & Immerman,
Cyphastrea chalcidium	Xarifia villosa
1979
Cyphastrea ocellina	Tegastes gemmus	1.2mm	Humes, 1985
Dendrogyra sp.	Corallovexia sp.		Stock, 1975
Dichocoenia sp.	Corallovexia sp.		Stock, 1975
Corallovexia
Diploria clivosa			Humes, 1984
mediobrachium
Herriot & Immerman,
Cyphastrea sp.	Diallagomolgus sp.
1979
Diploria labyrinthformis	Corallavexia brevibrachium		Humes, 1994
Corallavexia
Diploria strigosa			Stock, 1975
mediobrachium
Echinopora gemmacea	Xarifia dispar		Stock, 1975
Echinopora horrida	Xarifia echinoporae	1.5mm	Humes, 1985
Echinopora horrida	Anchimolgus exsertus	2.3mm	Humes, 1985
Echinopora lamellosa	Xarifia dispar		Humes, 1991
Echinopora lamellosa	Xarifia echinoporae	1.5mm	Humes, 1985
Echinopora lamellosa	Anchimolgus tridentatus	2.3mm	Humes, 1985
Echinopora sp.	Xarifia dispar		Kim, 2003
Eunicella singularis	Stockmyzon mucronipes	1.5mm	Humes, 1985
Bandera & Huys,
Euphyllia glabrescens	Xarifia gracilipes
2008
Eusmilia fastigata	Corallonoxia baki	~2mm	Humes, 1985
Favia	Amarda sp.
Favia favus	Cerioxynus alatus		Stock, 1975
Favia sp.	Orstomella faviae		Humes, 1994
Favia sp.	Rakotoa proteus		Humes, 1994
Favia sp.	Anchimolgus sp.	2.3mm; vermelho vivo, vermelho-escuro	eye Humes & Ho, 1968
Favia sp.	Andrianellus exsertidens		Humes, 1994
Favia sp.	Stockia sp.		Humes, 1994
Favites flexuosa	Xarifia torigera		Humes, 1994
Favites halicora	Cerioxynus faviticolus		Humes, 1994
Favites pentagona	Cerioxynus moluccensis	2.3mm; castanho pálido com olho	vermelho Humes, 1985
Favites pentagona	Rakotoa ceramensis		Humes, 1994
Favites virens	Cerioxynus bandensis		Humes, 1994
Fungia concinna	Anchimolgus maximus		Humes, 1979
Fungia echinata	Xarifia species		Humes, 1994
Fungia echinata	Anchimolgus latens		Kim, 2003
Fungia echinata	Anchimolgus pandus
Humes, 1985
Fungia echinata	Schedomolgus tener		Humes, 1978
Fungia fungites	Schedomolgus dumbensis		Humes, 1978
Fungia fungites	Odontomolgus scitulus		Humes, 1973
Fungia paumotensis	Anchimolgus orectus		Kim, 2003
Fungia paumotensis	Anchimolgus punctilis		Humes, 1973
Fungia species	Zazaranus fungicolus		Humes, 1978
Fungia species	Odontomolgus flammeus		Humes, 1978
Fungia species	Anchimolgus hastatus		Humes, 1985
Galaxea astreata	Xarifia species		Kim, 2007
Galaxea fascicularis	Xarifia exserens		Kim, 2007
Galaxea fascicularis	Anchimolgus compressus		Humes, 1985
Galaxea fascicularis	Anchimolgus contractus	2.3mm; cinza opaco, olho vermelho	Humes, 1985
Galaxea fascicularis	Anchimolgus moluccanus		Humes, 1996
Galaxea fascicularis	Anchimolgus nastuas		Humes, 1979
Gardineroseris planulata	Anchimolgus angustus		Humes, 1996
Gardineroseris planulata	Xarifia clavellata		Humes, 1996
Gardineroseris planulata	Xarifia filata		Humes, 1992
Gardineroseris planulata	Xarifia rasilis	0.8mm	Humes, 1985
Gardineroseris planulata	Odontomolgus mucosus	~1mm; cinza, olho vermelho	Humes, 1985
Gardineroseris planulata	Odontomolgus pumulis	0.9mm; cinza, com olho vermelho	Humes, 1985
Gardineroseris planulata	Odontomolgus unioviger		Kim, 2006
Gardineroseris planulata	Anchimolgus eparmatoides		Humes, 1992
Gardineroseris planulata	Anchimolgus gibberulus		Kim, 2006
Gardineroseris planulata	Anchimolgus stellus		Humes & Stock, 1972
Goniastrea retiformis	Alteuthellopsis corallina		Humes, 1992
Goniastrea retiformis	Amarda curvus		Humes, 1972
Goniastrea retiformis	Amarda goniastraea		Humes, 1981b
Goniastrea retiformis	Odontomolgus parvus		Kim, 2007
Goniopora minor	Wedanus formosanus		Humes, 1995
Goniopora pedunculata	Xarifia hadra		Kim, 2007
Goniopora pedunculata	Xarifia scutipes		Cheng et al., 2008
Goniopora species	Xarifia resex	1.7mm	Humes, 1985
Goniopora species	Anchimolgus conformatus	2mm	Humes, 1985
Goniopora species	Anchimolgus mimeticus	1.4mm	Humes, 1985
Goniopora species	Odontomolgus campulus		Humes & Stock, 1973
Goniopora stokesi	Anchimolgus brevarius		Humes, 1995
Goniopora stokesi	Anchimolgus gigas		Humes, 1995
Goniopora tenuidens	Xarifia hadra		Humes, 1995
Goniopora tenuidens	Xarifia resex		Humes & Stock, 1995
Goniopora tenuidens	Xarifia scutipes	1.7mm	Humes, 1985
Goniopora tenuidens	Wedanus inconstans	1.4mm	Humes, 1985
Gyrosmilia interrupta	Xarifia apertipes	2mm	Humes, 1985
Halomitra pileus	Odontomolgus fultus		Humes, 1978
Heliofungia actiniformis	Odontomolgus decens		Humes, 1985
Hydnophora exesa	Xarifia comptula		Humes & Stock, 1972
Humes and Stock,
Hydnophora exesa	Xarifia curtata
1972
Hydnophora exesa	Panjakus hydnophorae	2.5mm	Humes, 1985
Hydnophora microconus	Panjakus iratus	Up to 3.5mm	Humes & Ho, 1968
Humes and Stock,
Hydnophora microconus	Panjakus saccipes
1973
Hydnophora microconus	Anchimolgus paragensis		Kim, 2005
Hydnophora rigida	Panjakus eumeces		Humes, 1991
Hydnophora sp.	Humesiella corallicola		Kim, 2007
Hydnophora sp.	Panjakus sp.		Kim, 2005
Sebastian & Pillai,
Hydnophora sp.	Panjakus hydnophorae	1.5mm
1973
Hydnophora tenella	Panjakus hydnophorae		Humes, 1994
Humes and Stock,
Leptoria phrygia	Xarifia species
1973
Humes and Stock,
Leptoria tenuis	Panjakus directus
1973
Leptoria tenuis	Panjakus necopinus		Humes, 1985
Lobophyllia corymbosa	Orstomella lobophylliae		Humes, 1995
Lobophyllia costata	Orstomella lobophylliae		Humes, 1995
Manicina areolata	Corallavexia longibrachium	1.4mm; vermelho vivo, vermelho-escuro	eye Humes & Ho, 1968
Meandrina meandrites	Corallovexia sp.	1.4mm; vermelho vivo, vermelho-escuro	eye Humes & Ho, 1968
Meandrina meandrites	Corallonoxia baki		Stock, 1975
Herriot & Immerman,
Merulina ampliata	Alteuthellopsis corallina
1979
Merulina ampliata	Amardopsis merulinae		Stock, 1975
Merulina ampliata	Xarifia species		Humes, 1981b
Merulina ampliata	Odontomolgus bulbalis		Humes 1994
Montastrea brasiliana	Corallavexia ventrospina		Humes, 1985
Corallavexia dorsospinosa
Montastrea cavernosa			Humes. 1991
minor
Montastrea cavernosa	Corallavexia dorsospinosa		Stock, 1975
Montastrea cavernosa	Corallovexia sp.		Stock, 1975
Montastrea curta	Cerioxynus montastreae		Stock, 1975
Herriot & Immerman,
Montipora caliculata	Haplomolgus incolumis
1979
Montipora composita	Xarifia anopla		Humes, 1994
Montipora composita	Xarifia heteromeles		Humes, 1991
Montipora compressa	Odontomolgus forhani		Humes, 1985
Montipora foliosa	Xarifia species	~1mm	Humes, 1985
Xarifia pectinea (only 1
Montipora ramosa			Humes & Stock, 1972
found)
Montipora ramosa	Xarifia temnura		Humes, 1985
Montipora sinensis	Xarifia temnura	1mm; cinza, com olho vermelho	Humes, 1985
1.5mm; opaco, intestino castanho-avermelhado,
Montipora sp.	Xarifia anopla		Humes & Ho, 1968
olho vermelho
1.5mm; opaco, intestino castanho-avermelhado,
Montipora sp.	Xarifia extensa		Humes & Ho, 1968
olho vermelho
Montipora sp.	Xarifia species		Humes, 1985
Montipora stellata	Xarifia species	2.5mm	Humes, 1985
Montipora undata	Xarifia anopla		Humes, 1985
Montipora undata	Xarifia heteromeles		Humes, 1985
Montipora undata	Xarifia syntoma		Humes, 1985
Montipora undata	Haplomolgus subdeficiens	~1mm	Humes, 1985
Montipora undata	Xarifia temnura	0.8mm	Humes, 1985
Montipora verilli	Alteuthellopsis corallina		Humes, 1978
1.5mm; opaco, intestino castanho-avermelhado,
Montipora verrucosa	Tegastes gemmeus		Humes & Ho, 1968
olho vermelho
Montipora verrucosa	Xarifia apertipes		Humes, 1984
Mussusmillia hispida	Harpacticoida		Nogueira, 2003
Mycetophyllia lamarckiana	Corallovexia sp.		Humes, 1984
Mycetophyllia lamarckiana	Corallovexia sp. #2		Humes, 1985
Herriot & Immerman,
Oulophyllia crispa	Cerioxynus oulophillia
1979
Herriot & Immerman,
Oxypora sp.	Xarifia species
1979
Pachyseris rugosa	Xarifia acicularis		Humes, 1994
Pachyseris speciosa	Xarifia exigua		Humes, 1985
Pachyseris speciosa	Xarifia laminellispinosa	cinza, olho vermelho	Humes, 1985
Parahalometra robusta	Xarifia species	0.8mm; castanho-claro pálido, olho	vermelho Humes & Ho, 1968
Parahalometra robusta	Anchimolgus convexus	1.9mm	Humes & Ho, 1968
Pavona angularis	Odontomolgus actinophorus		Humes, 1985
Pavona angulata	Xarifia longipes		Humes, 1978
Humes and Stock,
Pavona angulata	Odontomolgus actinophorus
1973
Pavona cactus	Xarifia finitima	1.5mm	Humes, 1985
Humes and Stock,
Pavona cactus	Odontomolgus actinophorus
1973
Pavona danai	Odontomolgus actinophorus 1mm;	cinza, olho vermelho	Humes, 1985
Humes and Stock,
Pavona danai	Odontomolgus pavonus
1973
Humes and Stock,
Pavona danai	Anchimolgus gracilipes
1973
Pavona sp.	Xarifia diminuta		Kim, 2007
Pavona varians	Xarifia finitima		Kim, 2007
Pavona venusta	Odontomolgus actinophorus 1.35mm		Humes, 1985
Pavona sp.	Odontomolgus rhadinus		Humes & Stock, 1973
Pectinia lactuca	Mandobius regalis	1mm; cinza, olho vermelho	Humes, 1985
Humes and Stock,
Physogyra lichensteini	Xarifia gradata
1973
Physogyra lichensteini	Xarifia minax		Humes, 1994
Platygyra astreiformis	Panjakus platygyrae	1.3mm	Humes, 1985
Platygyra lamellina	Panjakus platygyrae	1.4mm	Humes, 1985
Platygyra daedala	Panjakus daedala		Humes, 1994
Humes and Stock,
Platygyra daedala	Alteuthellopsis corallina
1973
Humes and Stock,
Platygyra ryukyuensis	Panjakus fastigatus
1973
Platygyra ryukyuensis	Panjakus parvipes		Humes, 1981b
Platygyra ryukyuensis	Andrianellus papillipes		Kim, 2005
Platygyra sinensis	Xarifia species		Kim, 2005
Platygyra sp.	Alteuthellopsis corallina		Kim, 2007
Platygyra sp.	Xarifia dispar		Humes, 1985
Platygyra sp.	Panjakus sp.		Humes, 1981b
Platygyra daedala	Andrianellus exsertidens	1.5mm	Humes, 1985
Plerogyra sp.	Gelastomolgus		Humes & Stock, 1973
Pocillopora damicornis	Alteuthellopsis corallina		Humes, 1994
Pocillopora damicornis	Xarifia fimbriata		Humes, 1994
Pocillopora damicornis	Xarifia fissilis
Humes, 1981b
Pocillopora damicornis	Xarifia jugalis	~1.5mm	Humes, 1985
Pocillopora damicornis	Xarifia obesa	~2mm; cinza, com olho vermelho	Humes, 1985
Pocillopora damicornis	Xarifia quinaria	1.4mm; cinza, com olho vermelho	Cheng et al., 2007
Pocillopora damicornis	Xarifia sectilis	1.4mm	Humes, 1985
Pocillopora damicornis	Xarifia serrata		Humes, 1994
Pocillopora damicornis	Anchimolgus partenuides	1.7mm; cinza, com olho vermelho	Humes, 1985
Pocillopora damicornis var.
Xarifia fimbriata 1.3mm		Humes, 1985
caespitosa
Pocillopora damicornis var.
Xarifia imparilis		Kim, 2007
caespitosa
Pocillopora damicornis var.
Xarifia jugalis ~1.5mm		Humes, 1985
caespitosa
Pocillopora damicornis var.
Xarifia quinaria 1.5mm;	cinza, com olho vermelho	Humes, 1985
caespitosa
Pocillopora danae	Xarifia obesa	1.4mm; cinza, com olho vermelho	Humes, 1985
Pocillopora eydouxi	Xarifia comata	1.3mm; cinza, com olho vermelho	Humes, 1985
Pocillopora eydouxi	Xarifia fimbriata	~1.5mm; cinza a bege com olho vermelho	Humes, 1985
Pocillopora eydouxi	Xarifia imparilis	~1.2mm	Humes, 1985
Pocillopora eydouxi	Xarifia jugalis	~1.5mm	Humes, 1985
Pocillopora eydouxi	Xarifia maldivensis	1.5mm; cinza, com olho vermelho	Humes, 1985
Pocillopora eydouxi	Xarifia obesa	1.4mm; cinza, com olho vermelho	Humes, 1985
Pocillopora eydouxi	Xarifia sectilis	1.4mm	Humes, 1985
Pocillopora ligulata	Xarifia tenta	~1.5mm; cinza a bege com olho vermelho	Humes, 1985
Pocillopora sp.	Tegastes georgei	1.7mm; cinza, com olho vermelho	Humes, 1985
Pocillopora sp.	Xarifia fimbriata	1mm; cinza a bege com olho vermelho	Humes, 1985
Pocillopora sp.	Xarifia maldivensis		Humes, 1981
Pocillopora sp.	Xarifia obesa	~1.5mm	Humes, 1985
Pocillopora sp.	Xarifia serrata	1.4mm	Humes, 1985
Pocillopora sp. cf. verrucosa	Xarifia comata	~1.5mm; cinza a bege com olho vermelho	Humes, 1985
Pocillopora sp. cf. verrucosa	Xarifia obesa	1.3mm	Humes, 1985
Pocillopora sp. cf. verrucosa	Xarifia serrata	~1.2mm	Humes, 1985
Pocillopora verrucosa	Tegastes paulipes	~1.5mm; cinza a bege com olho vermelho	Humes, 1985
Pocillopora verrucosa	Xarifia comata	1.3mm	Humes, 1985
Pocillopora verrucosa	Xarifia gibberula		Humes, 1984
Pocillopora verrucosa	Xarifia imparilis	~1.2mm	Humes, 1985
Pocillopora verrucosa	Xarifia obesa	1.3mm cinza, com olho vermelho	Humes, 1985
Pocillopora verrucosa	Xarifia serrata	1.5mm; cinza, com olho vermelho	Humes, 1985
Pocillopora verrucosa	Xarifia tenta	~1.5mm; cinza a bege com olho vermelho	Humes, 1985
Pocillopora verrucosa	Panjakus bidentis	1.3mm	Humes, 1985
Porites (andrewsi?)	Monomolgus unihastatus	1mm; cinza a bege com olho vermelho	Humes, 1985
Porites (nigrescens?)	Monomolgus unihastatus		Kim, 2004
Humes and Stock,
Porites latistella	Xarifia longa
1973
Humes and Stock,
Porites lobata	Euryte verecunda
1973
Porites lobata	Hemicyclops regalis		Cheng et al., 2007
Porites lobata	Monomolgus torulus		Humes, 1992
Porites lobata	Kombia incrassata		Humes, 1994
Porites lutea	Orstomella yaliuensis		Humes, 1984
Porites lutea	Xarifia species		Humes, 1984
Porites lutea	Kombia curvata
Chen et al., 2009
Porites monticulosa	Kombia imminens		Humes, 1985
Porites somaliensis	Kombia angulata		Humes & Stock, 1973
Porites sp.	Kombia avitus		Nair & Pillai, 1986
Porites nigrescens	Monomolgus baculigeres		Humes, 1979
Psammocora sp.	Monomolgus psammocorae		Kim, 2007
Psammocora sp.	Kombia angulata		Humes, 1979
Humes and Stock,
Psammocora contigua	Xarifia diminuta
1973
Psammocora contigua	Xarifia imitans		Humes, 1962
Psammocora contigua	Odontomolgus actinophorus	1.35mm	Humes, 1985
Psammocora contigua	Numboa porosa		Humes, 1997
Psammocora contigua	Odontomolgus rhadinus	1.1mm; cinza, com olho vermelho	Humes, 1985
Humes and Stock,
Psammocora digitata	Xarifia formosa
1973
Psammocora digitata	Xarifia imitans		Humes & Ho, 1967
Psammocora logianensis	Dumbeana undulatipes	1.2mm; cinza, com olho vermelho	Humes, 1996
Psammocora logianensis	Emunoa proknta	1.1mm; cinza, com olho vermelho	Humes, 1996
Psammocora logianensis	Lipochaetes extrusis		Humes, 1996
Psammocora samoensis	Odontomolgus exilipes		Humes, 1995
Psammocora samoensis	Odontomolgus geminus		Humes, 1995
Psammocora sp.	Xarifia diminuta		Kim, 2003
Psammocora sp. cf. contigua	Xarifia diminuta		Kim, 2003
Psammocora togianensis	Numboa porosa		Humes, 1997
Scapophyllia cylindrica	Xarifia simplex	1.35mm	Humes, 1985
Seriatopora caliendrum	Xarifia reducta	1.35mm	Humes, 1985
Seriatopora hystrix	Xarifia eminula	1.8mm; cinza, com olho vermelho	Humes, 1985
Seriatopora hystrix	Xarifia levis	1.1mm	Humes, 1985
Seriatopora hystrix	Xarifia obesa	cinza opaco, olho vermelho	Humes & Ho, 1968
Seriatopora hystrix	Xarifia reducta	~1mm; bege com olho vermelho	Humes, 1985
Seriatopora hystrix	Xarifia umbonata	~1.5mm; cinza a bege com olho vermelho	Humes, 1985
Seriatopora hystrix	Xarifia varialabrata	1.1mm	Humes, 1985
Seriatopora hystrix	Anchiomolgus tenuipes	1.2mm; cinza, com olho vermelho	Humes, 1985
Seriatopora hystrix	Anchimolgus noumensis	0.8mm; castanho-claro pálido com	olho vermelho Humes, 1985
Seriatopora octoptera	Xarifia reducta		Kim, 2003
Seriatopora sp.	Xarifia reducta		Kim, 2003
Stereonephthya ulicoides	Parategastes conexus		Humes, 1993
Stylophora mordax	Xarifia decorata	1.1mm	Humes, 1985
Stylophora mordax	Xarifia lissa		Humes, 1984
1.5mm; opaco, intestino castanho-avermelhado,
Stylophora pistillata	Tegastes georgei		Humes & Ho, 1968
olho vermelho
1.4mm; opaco, intestino castanho-avermelhado,
Stylophora pistillata	Xarifia decorata		Humes, 1985
olho vermelho
Stylophora pistillata	Xarifia dissona		Humes, 1981
1.5mm; opaco, intestino castanho-avermelhado,
Stylophora pistillata	Xarifia lissa		Humes & Ho, 1968
olho vermelho
1.45mm; cinza, intestino castanho-escuro,
Stylophora pistillata	Xarifia obesa		Humes, 1985
olho vermelho
Stylophora pistillata	Xarifia sectilis	1.4mm	Humes, 1985
Stylophora pistillata var. palmata	Xarifia obesa	~1.5mm; cinza a bege com olho vermelho	Humes, 1985
Stylophora sp.	Xarifia decorata	1.7mm; cinza, com olho vermelho	Humes, 1985
Stylophora sp.	Xarifia lissa	~1.5mm; cinza a bege com	olho vermelho
Humes, 1985
1.5mm; opaco, intestino castanho-avermelhado,
Stylophora sp.	Xarifia species		Humes & Ho, 1968
olho vermelho
Stylophora subseriata	Xarifia serrata	1.4mm	Humes, 1985
Tubastrea aurea	Xarifia insolita		Humes, 1985
Tubastrea aurea	Xarifia insolita	1.3mm	Humes, 1985
Tubastrea sp.	Xarifia species		Humes, 1985
Turbinaria danae	Xarifia lacerans		Cheng et al., 2007
Turbinaria danae	Xarifia unicata		Humes, 1985
Turbinaria sp. (T. elegans?)	Xarifia hamata	~1mm; cinza, com olho vermelho	Humes, 1985
Wedanus inconstans	Goniopora minor	1.6mm; cinza, com olho vermelho	Humes, 1985

Listagem por parasita

Parasita	Coral hospedeiro
Xarifia plectrata	Acrhelia horrescens
Anchimolgus abbreviatus	Acrhelia horrescens
Anchimolgus tenuipes	Acrhelia horrescens
Xarifia anomala	Acropora abrotanoides
Xarifia breviramea	Acropora abrotanoides
Xarifia sabiuraensis	Acropora abrotanoides
Xarifia trituberata	Acropora abrotanoides
Xarifia anomala	Acropora convexa
Xarifia sabiuraensis	Acropora convexa
Scyphuliger longicaudus	Acropora convexa
Xarifia anomala	Acropora ‘corymbosa’ group
Xarifia breviramea	Acropora ‘corymbosa’ group
Xarifia gerlachi	Acropora ‘corymbosa’ group
Xarifia infrequens	Acropora ‘corymbosa’ group
Xarifia linearis	Acropora ‘corymbosa’
Xarifia trituberata	Acropora ‘corymbosa’ group
Xarifia tumorisa	Acropora ‘corymbosa’ group
Xarifia ablusa	Acropora ‘corymbosa’ group
Scyphuliger pilosus	Acropora corymbosa
Scyphuliger pennatus	Acropora corymbosa
Scyphuliger tenuatis	Acropora cymbicyanthus
Xarifia gerlachi	Acropora cytheria
Xarifia infrequens	Acropora cytheria
Xarifia tenuis	Acropora cytheria
Xarifia ablusa	Acropora digitifera (?)
Xarifia anomala	Acropora digitifera (?)
Xarifia breviramea	Acropora digitifera (?)
Xarifia gerlachi	Acropora digitifera (?)
Xarifia infrequens	Acropora digitifera (?)
Xarifia linearis	Acropora digitifera (?)
Xarifia trituberata	Acropora digitifera (?)
Xarifia tumorisa	Acropora digitifera (?)
Xarifia ablusa	Acropora elseyi
Xarifia fastigata	Acropora elseyi
Xarifia tumorisa	Acropora elseyi
Alteuthellopsis corallina	Acropora exigua
Xarifia breviramea	Acropora exigua
Ecphysarion lobophorum	Acropora exigua
Scyphuliger latus	Acropora exilis
Scyphuliger aristoides	Acropora exilis
Scyphuliger paucisurculus	Acropora exilis
Ecphysarion lobophorum	Acropora florida
Tegastes acroporanus	Acropora florida
Xarifia anomala	Acropora florida
Xarifia breviramea	Acropora florida
Xarifia gerlachi	Acropora florida
Xarifia pectinea	Acropora florida
Xarifia sabiuraensis	Acropora florida
Xarifia trituberata	Acropora florida
Xarifia tumorisa	Acropora florida
Xarifia basilica	Acropora formosa
Xarifia bullifera	Acropora formosa
Xarifia infrequens	Acropora formosa
Xarifia tumorisa	Acropora formosa
Xarifia species	Acropora gemmifera
Xarifia anomala	Acropora gravida
Xarifia breviramea	Acropora gravida
Xarifia gerlachi	Acropora gravida
Xarifia pectinea	Acropora gravida
Xarifia sabiuraensis	Acropora gravida
Xarifia trituberata	Acropora gravida
Xarifia tumorisa	Acropora gravida
Xarifia indica	Acropora hebes
Xarifia laccadivensis	Acropora hebes
Xarifia robusta	Acropora hebes
Xarifia ablusa	Acropora humilis
Xarifia anomala	Acropora humilis
Xarifia breviramea	Acropora humilis
Xarifia gerlachi	Acropora humilis
Xarifia infrequens	Acropora humilis
Xarifia linearis	Acropora humilis
Xarifia longicauda	Acropora humilis
Xarifia pectinea	Acropora humilis
Xarifia trituberata	Acropora humilis
Xarifia tumorisa	Acropora humilis
Xarifia anomala	Acropora hyacinthus
Xarifia basilica	Acropora hyacinthus
Xarifia breviramea	Acropora hyacinthus
Xarifia gerlachi	Acropora hyacinthus
Xarifia infrequens	Acropora hyacinthus
Xarifia pectinea	Acropora hyacinthus
Xarifia sabiuraensis	Acropora hyacinthus
Xarifia trituberata	Acropora hyacinthus
Xarifia tumorisa	Acropora hyacinthus
Scyphuliger concavipes	Acropora hyacinthus
Scyphuliger manifestus	Acropora hyacinthus
Scyphuliger eumorphus	Acropora hyacinthus
Xarifia anomala	Acropora intermeda
Xarifia breviramea	Acropora intermeda
Xarifia pectinea	Acropora intermedia
Xarifia sabiuraensis	Acropora intermedia
Xarifia trituberata	Acropora intermedia
Xarifia tumorisa	Acropora intermedia
Scyphuliger karangmiensis	Acropora intermedia
Xarifia breviramea	Acropora millepora
Xarifia anomala	Acropora palifera
Xarifia exuta	Acropora palifera
Xarifia guttulifera	Acropora palifera
Xarifia mucronata	Acropora palifera
Schedomolgus exciliculus	Acropora palifera
Ecphysarion spinulatum	Acropora palifera
Unicispina latigentalis	Acropora palifera
Corallavexia similis	Acropora palmata
Corallovexia sp.	Acropora palmata
Lipochrus acroporinus	Acropora patula
Xarifia pectinea	Acropora patula
Xarifia sabiuraensis	Acropora patula
Xarifia trituberata	Acropora patula
Xarifia tumorisa	Acropora patula
Schedomolgus idanus	Acropora patula
Xarifia sp.	Acropora pectinata
Xarifia sp.	Acropora pectinata
Lipochrus species	Acropora rambleri
Xarifia ablusa	Acropora rambleri
Xarifia breviramea	Acropora rambleri
Xarifia pectinea	Acropora rambleri
Xarifia sabiuraensis	Acropora rambleri
Xarifia trituberata	Acropora rambleri
Lipochrus acroporinus	Acropora rosaria
Xarifia ablusa	Acropora rosaria
Xarifia fastigata	Acropora rosaria
Xarifia rosariae	Acropora rosaria
Ecphysarion ampullulum	Acropora rosaria
Lipochrus acroporinus	Acropora rosaria
Xarifia pectinea	Acropora sarmentosa
Xarifia tumorisa	Acropora sarmentosa
Xarifia anomala	Acropora sp.
Xarifia gerlachi	Acropora sp.
Xarifia gerlachi	Acropora sp. cf. A. teres
Xarifia tumorisa	Acropora squarrosa (millepora)
Scyphuliger placidus	Acropora squarrosa (millepora)
Scyphuliger humesi	Acropora squarrosa (millepora)
Scyphuliger vicinus	Acropora squarrosa (millepora)
Xarifia species	Acropora syringodes
Xarifia breviramea	Acropora valida
Anchimolgus multidentatus	Alveopora catalai
Xarifia mediolobata	Alveopora mortensi
Xarifia radians	Alveopora mortensi
Odontomolgus mundulus	Alveopora mortensi
Xarifia brevicauda	Alveopora sp.
Alteuthellopsis corallina	Astreopora sp.
Acontiophorus scutatis	Astreocheres astroidicola
Stockmyzon murinipes	Astroides calycularis
Stockmyzon mucronipes	Astroides calycularis
Corallavexia kristenseni	Colpophyllia natans
Corallavexia mixtibrachium	Colpophyllia natans
Corallovexia mediobrachium	Colpophyllia natans
Xarifia villosa	Cyphastrea chalcidium
Tegastes gemmus	Cyphastrea ocellina
Corallovexia sp.	Dendrogyra sp.
Corallovexia sp.	Dichocoenia sp.
Corallovexia mediobrachium	Diploria clivosa
Diallagomolgus sp.	Cyphastrea sp.
Corallavexia brevibrachium	Diploria labyrinthformis
Corallavexia mediobrachium	Diploria strigosa
Xarifia dispar	Echinopora gemmacea
Xarifia echinoporae	Echinopora horrida
Anchimolgus exsertus	Echinopora horrida
Xarifia dispar	Echinopora lamellosa
Xarifia echinoporae	Echinopora lamellosa
Anchimolgus tridentatus	Echinopora lamellosa
Xarifia dispar	Echinopora sp.
Stockmyzon mucronipes	Eunicella singularis
Xarifia gracilipes	Euphyllia glabrescens
Corallonoxia baki	Eusmilia fastigata
Amarda sp.	Favia
Cerioxynus alatus	Favia favus
Orstomella faviae	Favia sp.
Rakotoa proteus	Favia sp.
Anchimolgus sp.	Favia sp.
Andrianellus exsertidens	Favia sp.
Stockia sp.	Favia sp.
Xarifia torigera	Favites flexuosa
Cerioxynus faviticolus	Favites halicora
Cerioxynus moluccensis	Favites pentagona
Rakotoa ceramensis	Favites pentagona
Cerioxynus bandensis	Favites virens
Anchimolgus maximus	Fungia concinna
Xarifia species	Fungia echinata
Anchimolgus latens	Fungia echinata
Anchimolgus pandus	Fungia echinata
Schedomolgus tener	Fungia echinata
Schedomolgus dumbensis	Fungia fungites
Odontomolgus scitulus	Fungia fungites
Anchimolgus orectus	Fungia paumotensis
Anchimolgus punctilis	Fungia paumotensis
Zazaranus fungicolus	Fungia species
Odontomolgus flammeus	Fungia species
Anchimolgus hastatus	Fungia species
Xarifia species	Galaxea astreata
Xarifia exserens	Galaxea fascicularis
Anchimolgus compressus	Galaxea fascicularis
Anchimolgus contractus	Galaxea fascicularis
Anchimolgus moluccanus	Galaxea fascicularis
Anchimolgus nastuas	Galaxea fascicularis
Anchimolgus angustus	Gardineroseris planulata
Xarifia clavellata	Gardineroseris planulata
Xarifia filata	Gardineroseris planulata
Xarifia rasilis	Gardineroseris planulata
Odontomolgus mucosus	Gardineroseris planulata
Odontomolgus pumulis	Gardineroseris planulata
Odontomolgus unioviger	Gardineroseris planulata
Anchimolgus eparmatoides	Gardineroseris planulata
Anchimolgus gibberulus	Gardineroseris planulata
Anchimolgus stellus	Gardineroseris planulata
Alteuthellopsis corallina	Goniastrea retiformis
Amarda curvus	Goniastrea retiformis
Amarda goniastraea	Goniastrea retiformis
Odontomolgus parvus	Goniastrea retiformis
Wedanus formosanus	Goniopora minor
Xarifia hadra	Goniopora pedunculata
Xarifia scutipes	Goniopora pedunculata
Xarifia resex	Goniopora species
Anchimolgus conformatus	Goniopora species
Anchimolgus mimeticus	Goniopora species
Odontomolgus campulus	Goniopora species
Anchimolgus brevarius	Goniopora stokesi
Anchimolgus gigas	Goniopora stokesi
Xarifia hadra	Goniopora tenuidens
Xarifia resex	Goniopora tenuidens
Xarifia scutipes	Goniopora tenuidens
Wedanus inconstans	Goniopora tenuidens
Xarifia apertipes	Gyrosmilia interrupta
Odontomolgus fultus	Halomitra pileus
Odontomolgus decens	Heliofungia actiniformis
Xarifia comptula	Hydnophora exesa
Xarifia curtata	Hydnophora exesa
Panjakus hydnophorae	Hydnophora exesa
Panjakus iratus	Hydnophora microconus
Panjakus saccipes	Hydnophora microconus
Anchimolgus paragensis	Hydnophora microconus
Panjakus eumeces	Hydnophora rigida
Humesiella corallicola	Hydnophora sp.
Panjakus sp.	Hydnophora sp.
Panjakus hydnophorae	Hydnophora sp.
Panjakus hydnophorae	Hydnophora tenella
Xarifia species	Leptoria phrygia
Panjakus directus	Leptoria tenuis
Panjakus necopinus	Leptoria tenuis
Orstomella lobophylliae	Lobophyllia corymbosa
Orstomella lobophylliae	Lobophyllia costata
Corallavexia longibrachium	Manicina areolata
Corallovexia sp.	Meandrina meandrites
Corallonoxia baki	Meandrina meandrites
Alteuthellopsis corallina	Merulina ampliata
Amardopsis merulinae	Merulina ampliata
Xarifia species	Merulina ampliata
Odontomolgus bulbalis	Merulina ampliata
Corallavexia ventrospina	Montastrea brasiliana
Corallavexia dorsospinosa minor	Montastrea cavernosa
Corallavexia dorsospinosa	Montastrea cavernosa
Corallovexia sp.	Montastrea cavernosa
Cerioxynus montastreae	Montastrea curta
Haplomolgus incolumis	Montipora caliculata
Xarifia anopla	Montipora composita
Xarifia heteromeles	Montipora composita
Odontomolgus forhani	Montipora compressa
Xarifia species	Montipora foliosa
Xarifia pectinea (only 1 found)	Montipora ramosa
Xarifia temnura	Montipora ramosa
Xarifia temnura	Montipora sinensis
Xarifia anopla	Montipora sp.
Xarifia extensa	Montipora sp.
Xarifia species	Montipora sp.
Xarifia species	Montipora stellata
Xarifia anopla	Montipora undata
Xarifia heteromeles	Montipora undata
Xarifia syntoma	Montipora undata
Haplomolgus subdeficiens	Montipora undata
Xarifia temnura	Montipora undata
Alteuthellopsis corallina	Montipora verilli
Tegastes gemmeus	Montipora verrucosa
Xarifia apertipes	Montipora verrucosa
Harpacticoida	Mussusmillia hispida
Corallovexia sp.	Mycetophyllia lamarckiana
Corallovexia sp. #2	Mycetophyllia lamarckiana
Cerioxynus oulophillia	Oulophyllia crispa
Xarifia species	Oxypora sp.
Xarifia acicularis	Pachyseris rugosa
Xarifia exigua	Pachyseris speciosa
Xarifia laminellispinosa	Pachyseris speciosa
Xarifia species	Parahalometra robusta
Anchimolgus convexus	Parahalometra robusta
Odontomolgus actinophorus	Pavona angularis
Xarifia longipes	Pavona angulata
Odontomolgus actinophorus	Pavona angulata
Xarifia finitima	Pavona cactus
Odontomolgus actinophorus	Pavona cactus
Odontomolgus actinophorus	Pavona danai
Odontomolgus pavonus	Pavona danai
Anchimolgus gracilipes	Pavona danai
Xarifia diminuta	Pavona sp.
Xarifia finitima	Pavona varians
Odontomolgus actinophorus	Pavona venusta
Odontomolgus rhadinus	Pavona sp.
Mandobius regalis	Pectinia lactuca
Xarifia gradata	Physogyra lichensteini
Xarifia minax	Physogyra lichensteini
Panjakus platygyrae	Platygyra astreiformis
Panjakus platygyrae	Platygyra lamellina
Panjakus daedala	Platygyra daedala
Alteuthellopsis corallina	Platygyra daedala
Panjakus fastigatus	Platygyra ryukyuensis
Panjakus parvipes	Platygyra ryukyuensis
Andrianellus papillipes	Platygyra ryukyuensis
Xarifia species	Platygyra sinensis
Alteuthellopsis corallina	Platygyra sp.
Xarifia dispar	Platygyra sp.
Panjakus sp.	Platygyra sp.
Andrianellus exsertidens	Platygyra daedala
Gelastomolgus	Plerogyra sp.
Alteuthellopsis corallina	Pocillopora damicornis
Xarifia fimbriata	Pocillopora damicornis
Xarifia fissilis	Pocillopora damicornis
Xarifia jugalis	Pocillopora damicornis
Xarifia obesa	Pocillopora damicornis
Xarifia quinaria	Pocillopora damicornis
Xarifia sectilis	Pocillopora damicornis
Xarifia serrata	Pocillopora damicornis
Anchimolgus partenuides	Pocillopora damicornis
Xarifia fimbriata	Pocillopora damicornis var. caespitosa
Xarifia imparilis	Pocillopora damicornis var. caespitosa
Xarifia jugalis	Pocillopora damicornis var. caespitosa
Xarifia quinaria	Pocillopora damicornis var. caespitosa
Xarifia obesa	Pocillopora danae
Xarifia comata	Pocillopora eydouxi
Xarifia fimbriata	Pocillopora eydouxi
Xarifia imparilis	Pocillopora eydouxi
Xarifia jugalis	Pocillopora eydouxi
Xarifia maldivensis	Pocillopora eydouxi
Xarifia obesa	Pocillopora eydouxi
Xarifia sectilis	Pocillopora eydouxi
Xarifia tenta	Pocillopora ligulata
Tegastes georgei	Pocillopora sp.
Xarifia fimbriata	Pocillopora sp.
Xarifia maldivensis	Pocillopora sp.
Xarifia obesa	Pocillopora sp.
Xarifia serrata	Pocillopora sp.
Xarifia comata	Pocillopora sp. cf. verrucosa
Xarifia obesa	Pocillopora sp. cf. verrucosa
Xarifia serrata	Pocillopora sp. cf. verrucosa
Tegastes paulipes	Pocillopora verrucosa
Xarifia comata	Pocillopora verrucosa
Xarifia gibberula	Pocillopora verrucosa
Xarifia imparilis	Pocillopora verrucosa
Xarifia obesa	Pocillopora verrucosa
Xarifia serrata	Pocillopora verrucosa
Xarifia tenta	Pocillopora verrucosa
Panjakus bidentis	Pocillopora verrucosa
Monomolgus unihastatus	Porites (andrewsi?)
Monomolgus unihastatus	Porites (nigrescens?)
Xarifia longa	Porites latistella
Euryte verecunda	Porites lobata
Hemicyclops regalis	Porites lobata
Monomolgus torulus	Porites lobata
Kombia incrassata	Porites lobata
Orstomella yaliuensis	Porites lutea
Xarifia species	Porites lutea
Kombia curvata	Porites lutea
Kombia imminens	Porites monticulosa
Kombia angulata	Porites somaliensis
Kombia avitus	Porites sp.
Monomolgus baculigeres	Porites nigrescens
Monomolgus psammocorae	Psammocora sp.
Kombia angulata	Psammocora sp.
Xarifia diminuta	Psammocora contigua
Xarifia imitans	Psammocora contigua
Odontomolgus actinophorus	Psammocora contigua
Numboa porosa	Psammocora contigua
Odontomolgus rhadinus	Psammocora contigua
Xarifia formosa	Psammocora digitata
Xarifia imitans	Psammocora digitata
Dumbeana undulatipes	Psammocora logianensis
Emunoa proknta	Psammocora logianensis
Lipochaetes extrusis	Psammocora logianensis
Odontomolgus exilipes	Psammocora samoensis
Odontomolgus geminus	Psammocora samoensis
Xarifia diminuta	Psammocora sp.
Xarifia diminuta	Psammocora sp. cf. contigua
Numboa porosa	Psammocora togianensis
Xarifia simplex	Scapophyllia cylindrica
Xarifia reducta	Seriatopora caliendrum
Xarifia eminula	Seriatopora hystrix
Xarifia levis	Seriatopora hystrix
Xarifia obesa	Seriatopora hystrix
Xarifia reducta	Seriatopora hystrix
Xarifia umbonata	Seriatopora hystrix
Xarifia varialabrata	Seriatopora hystrix
Anchiomolgus tenuipes	Seriatopora hystrix
Anchimolgus noumensis	Seriatopora hystrix
Xarifia reducta	Seriatopora octoptera
Xarifia reducta	Seriatopora sp.
Parategastes conexus	Stereonephthya ulicoides
Xarifia decorata	Stylophora mordax
Xarifia lissa	Stylophora mordax
Tegastes georgei	Stylophora pistillata
Xarifia decorata	Stylophora pistillata
Xarifia dissona	Stylophora pistillata
Xarifia lissa	Stylophora pistillata
Xarifia obesa	Stylophora pistillata
Xarifia sectilis	Stylophora pistillata
Xarifia obesa	Stylophora pistillata var. palmata
Xarifia decorata	Stylophora sp.
Xarifia lissa	Stylophora sp.
Xarifia species	Stylophora sp.
Xarifia serrata	Stylophora subseriata
Xarifia insolita	Tubastrea aurea
Xarifia insolita	Tubastrea aurea
Xarifia species	Tubastrea sp.
Xarifia lacerans	Turbinaria danae
Xarifia unicata	Turbinaria danae
Xarifia hamata	Turbinaria sp. (T. elegans?)
Wedanus inconstans	Goniopora minor

Referências

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Nota: Este conteúdo foi originalmente publicado pela revista Reefs.com, no texto: “Aquarium Corals: Stony Coral Parasites: Red and Black Bugs: Identification Guide, Preventive Measures, and a Review of Treatment Protocols”, escrito por: “Dana Riddle”. Link: "https://reefs.com/magazine/aquarium-corals-stony-coral-parasites-red-and-black-bugs-identification-guide-preventive-measures-and-a-review-of-treatment-protocols/". A tradução desse conteúdo não é literal. O tradutor tomou a liberdade de contextualizar algumas frases para a realidade brasileira, bem como adicionou/ suprimiu alguns trechos consideradas irrelevantes para a compreensão do assunto de maneira geral. O objetivo sempre é dar acesso ao conteúdo da maneira mais simples e prática possível, no entanto, sem perder a essência do conhecimento passado. Embora o texto seja revisado antes da postagem repetidas vezes, o mesmo sempre estará passível de erros. Dessa forma, humildemente peço que me informem nos comentários qualquer alteração a ser feita, para que eu possa corrigi-la o mais breve possível.

Att, Rodrigo